Метагеномная идентификация бактериальных возбудителей ОРЗ и их устойчивости к антибиотикам
Исследовательская метагеномная идентификация бактериальных возбудителей пневмонии и ОРЗ с профилем AMR (RUO)
🧬 Описание пайплайна
Бактериальные острые респираторные заболевания (ОРЗ) — от внебольничной пневмонии до обострений ХОБЛ — требуют срочного выбора антибиотика. Стандартный путь: посев мокроты (2–5 дней) или экспресс-тест на единственный патоген. Оба подхода не дают ответа на ключевой вопрос — чувствителен ли данный штамм к конкретному антибиотику, — особенно в условиях нарастающей AMR.
Наш пайплайн использует метагеномное нанопоровое секвенирование (mNGS) непосредственно из клинического материала (мокрота, БАЛ, аспират). Все бактериальные патогены выявляются одновременно, а для каждого — автоматически определяется наличие генов и мутаций резистентности к антибиотикам первой и второй линии.
- 📥 На входе: Сырые данные в формате
FASTQпосле High Accuracy basecalling (Dorado SUP, химия R10.4.1). Материал: мокрота, назофарингеальный аспират, БАЛ, плевральная жидкость. - 📤 На выходе: Исследовательский HTML-отчёт (RUO) — идентифицированные патогены, количественная представленность, профиль генов AMR; QC-отчёт для биоинформатика.
📊 Доступность продукта
| Платформа | Статус доступности |
|---|---|
| OnSiteSeq Cockpit Edge | 🟡 В разработке |
| OnSiteSeq Cockpit Desktop | 🟡 В разработке |
| OnSiteSeq Cockpit Cloud | 🔴 Недоступно |
🦠 Определяемые патогены
| Патоген | Клиническое значение |
|---|---|
| Streptococcus pneumoniae | Ведущий возбудитель внебольничной пневмонии; анализ pbp-генов → устойчивость к пенициллину |
| Haemophilus influenzae | Второй по частоте возбудитель ВП; частый возбудитель обострений ХОБЛ |
| Moraxella catarrhalis | Характерен при ХОБЛ; >90% штаммов продуцируют β-лактамазу (BRO-1/BRO-2) |
| Mycoplasma pneumoniae | Атипичная пневмония; резистентность к макролидам — ключевая клиническая проблема |
| Legionella pneumophila | Болезнь легионеров; тяжёлое течение; терапия фторхинолонами |
| Staphylococcus aureus (MRSA/MSSA) | Госпитальная пневмония; определение mecA критично для выбора терапии |
| Klebsiella pneumoniae | Нозокомиальная пневмония; ESBL и карбапенемазы — угроза исходу |
| Pseudomonas aeruginosa | Хроническое лёгкое (муковисцидоз, ХОБЛ); множественная природная резистентность |
| Acinetobacter baumannii | ИТАР (ИВЛ-ассоциированная пневмония); часто XDR; карбапенемазы |
🎯 Ключевые гены резистентности
β-лактамы (пенициллины и цефалоспорины)
| Ген / механизм | Патоген | Значение |
|---|---|---|
| pbp1a, pbp2b, pbp2x (мутации) | S. pneumoniae | Устойчивость к пенициллину и цефалоспоринам |
| blaTEM-1 | H. influenzae | β-лактамазная устойчивость к ампициллину |
| BRO-1 / BRO-2 | M. catarrhalis | β-лактамаза (>90% штаммов) |
| mecA / mecC | S. aureus | MRSA — устойчивость к оксациллину и всем β-лактамам |
| blaSHV, blaTEM, blaCTX-M | K. pneumoniae | ESBL — устойчивость к цефалоспоринам III–IV |
| blaKPC, blaNDM, blaOXA-48 | K. pneumoniae, P. aeruginosa, A. baumannii | Карбапенемазы — устойчивость к карбапенемам |
Макролиды и атипичные антибиотики
| Ген | Патоген | Класс |
|---|---|---|
| ermB, mefA | S. pneumoniae | Устойчивость к азитромицину, кларитромицину |
| 23S rRNA (A2058G, A2059G) | M. pneumoniae | Макролид-резистентность (растёт в РФ и Азии) |
Фторхинолоны
| Ген | Патоген | Значение |
|---|---|---|
| gyrA, parC (мутации) | S. pneumoniae, K. pneumoniae, P. aeruginosa | Устойчивость к левофлоксацину, моксифлоксацину |
Профиль антибиотиков в отчёте
| Антибиотик | Класс | Актуальность |
|---|---|---|
| Амоксициллин/клавуланат | Аминопенициллин + ингибитор β-лактамазы | Первая линия ВП амбулаторно |
| Цефтриаксон | Цефалоспорин III | Первая линия ВП стационарно |
| Азитромицин / Кларитромицин | Макролиды | Атипичные патогены; мониторинг ermB |
| Левофлоксацин / Моксифлоксацин | Фторхинолоны | «Респираторные хинолоны»; ХОБЛ |
| Меропенем / Имипенем | Карбапенемы | Тяжёлая нозокомиальная пневмония |
| Ванкомицин / Линезолид | Гликопептид / Оксазолидинон | MRSA-пневмония |
🧪 Оптимизация под кассету Flongle
OnSiteSeq Edge рассчитан на компактные кассеты Flongle (~126 активных пор, реальный выход ~0,5–2 Гб против 10–20 Гб у полноразмерной кассеты). Для метагеномики это определяет дизайн пайплайна:
- Adaptive Sampling (Read Until) — отклонение человеческих ридов в реальном времени прямо во время секвенирования. На Flongle каждый рид на счету: обогащение доли патогенных ридов в 3–10 раз без химической деплеции.
- Химическая деплеция хозяина (сапониновая лизис-деплеция + DNase) — на этапе препаративки снижает долю человеческой ДНК в мокроте/БАЛ с 90–99 % до ~50–80 %.
- Честный порог чувствительности — при выходе ~1 Гб надёжная детекция требует доли патогена ≥ 0,1–1 % в метагеноме. Для более слабых образцов предусмотрен таргетный режим (ампликонное обогащение) вместо «чистого» mNGS.
- Мультиплексирование — баркодирование 2–4 образцов на кассету экономит реагенты, но снижает глубину на образец; для образцов с низкой бактериальной нагрузкой рекомендуется один образец на Flongle.
- Детекция AMR-генов — требует покрытия генома патогена; при недостаточной глубине отчёт выдаёт идентификацию вида с пометкой «профиль AMR не установлен», без выдумывания результата.
По мере роста выхода кассет и точности химии ONT те же пайплайны без изменений перейдут на более глубокое покрытие — пороги чувствительности заданы конфигурацией запуска, а не зашиты в код.
⚙️ Версии и ML-модели
Основной инструмент
| Компонент | Статус |
|---|---|
| OnSiteSeq ОРЗ Pipeline | 🟡 В разработке |
Планируемые ML-модели
| Модель | Целевая задача |
|---|---|
| BactResp-Classifier | Метагеномная классификация бактериальных патогенов (k-мерный классификатор) |
| BactResp-AMR-Detector | Предсказание AMR-фенотипа по выявленным генам резистентности |
| Pneumo-Serotyper | In silico серотипирование S. pneumoniae (важно для оценки охвата вакциной PCV) |
Обучение планируется на геномах из NCBI Pathogen Database и европейской коллекции ECDC Surveillance Atlas of Infectious Diseases.
🛠 Под капотом: Зависимости и Окружение (Pipeline Stack)
| Этап пайплайна | Ключевые библиотеки и инструменты |
|---|---|
| 1. Контроль качества (QC) | porechop_abi, NanoFilt, pigz |
| 2. Деплеция хозяйских ридов | minimap2 (ref: GRCh38) → исключение человеческих ридов |
| 3. Метагеномная классификация | Kraken2 + Bracken (RefSeq bacterial DB) |
| 4. Целевое выравнивание и сборка | minimap2 + medaka на референсы выявленных патогенов |
| 5. Детекция генов AMR | AMRFinderPlus (NCBI), abricate (базы CARD, Resfinder, VFDB) |
| 6. MLST-типирование | mlst (схемы PubMLST: пневмококк, K. pneumoniae, S. aureus) |
| 7. ML-инференс | PyTorch, pandas, scikit-learn |
🌍 Глобальный контекст
- ВОЗ AMR Action Plan — устойчивые K. pneumoniae, P. aeruginosa, A. baumannii включены в список «критических» приоритетных патогенов (наивысший уровень угрозы).
- Россия — по данным СКАТ (Стратегия контроля антимикробной терапии), доля ESBL-продуцирующих K. pneumoniae в ОРИТ превышает 70%.
- Проблема эмпирической терапии — в условиях неизвестного возбудителя врач вынужден назначать антибиотики широкого спектра, что ускоряет формирование AMR. В перспективе — после клинической валидации и регистрации — быстрая метагеномная идентификация возбудителя могла бы помочь перейти к целенаправленной терапии; сейчас пайплайн только для исследовательских целей (RUO).
- MRSA-пневмония — летальность при ИВЛ-ассоциированной MRSA-пневмонии достигает 40–60%; своевременное определение mecA критично.
🔬 Связанные источники
AI medtech платформа для управления контейнеризованными биоинформатическими пайплайнами.
Edge-платформа. Рабочее место. Облачные вычисления.
Свидетельство о государственной регистрации программы для ЭВМ № 2026680748.
Проект начат в МФТИ, продолжен в аспирантуре РНИМУ им. Н.И. Пирогова.
Получение разрешений и валидация в процессе. Текущий статус — RUO. Только для научных исследований. Не для диагностики.
Проект — участник топ-1000 университетских стартапов и Акселерационной программы «Будущее медицины».